Page 53 - 03-Ecologization

DOI: https://doi.org/10.15414/2020.9788055222783
Экологизация защиты растений для сохранения биоразнообразия насекомых и опылителей

материал получали в лабораторных условиях методом массового разведения с
использованием соответствующих пищевых субстратов (зерно и др.). Опыты
проводили в 3-5 повторностях, по 10-20 насекомых. Определяли контактное
действие путем подсадки насекомых в чашки Петри с обработанными экстрактами
или эфирными маслами фильтровальными кружками и учетом погибших особей в
течение 3 суток.
Insecta / Lepidoptera. Луговой мотылек, Loxostege sticticalis L., Crambidae;
капустная совка, Mamestra brassicae L. и хлопковая совка Helicoverpa armigera Hbn.,
Noctuidae; американская белая бабочка, Hyphantria cunea Drury, Arctiinae; капустная
белянка, Pieris brassicae L., Pieridae; большая восковая моль, Galleria mellonella L.
Pyralidae. Биологический материал вышеперечисленных видов Lepidoptera получали
в лабораторных условиях методом массового разведения с использованием
искусственных питательных сред (ИПС) или соответствующих кормовых растений.
Для гусениц G. mellonella в опытах кормом служила ИПС – с/без добавления экстрактов
и эфирных масел. Для остальных видов насекомых кормом в опытах служили как ИПС,
так и соответствующие кормовые растения – листья целиком (шелковицы и др.) или
нарезанные квадратами с одинаковой площадью (капусты и др.).
Insecta / Hemiptera. Большая картофельная тля Macrosiphum euphorbiae
Thom.; гороховая тля, Acyrthosiphon pisum (Harris); персиковая тля, Myzodes persicae
Sulz., Aphididae. Тестирование проводили в лабораторных условиях на
соответствующих тест-растениях, зараженных колониями тлей, по 50 особей в
колонии в трех повторностях.
Кроме того, в качестве тест-объектов были использованы: корневая
галлообразующая фитонематода Meloidogyne marioni Corni, Meloidogynidae
(Insecta / Tylenchida), боярышниковый клещ, Tetranychus vienensis L.; и паутинный
клещ, Tetranychus urticae Koch., Tetranychidae (Arachnida / Acariformes). Опыты
проводили в лаборатории согласно стандартным методикам (Яркулов, 2015).
Овицидная активность. Для каждой яйцекладки вели отдельный учет яиц и
отродившихся/погибших личинок. Яйцекладки обрабатывали методом окунания
в растворы на 30 секунд. Затем выдерживали на фильтровальной бумаге до
подсыхания растворов на листьях и помещали в чашки Петри. Наблюдения
проводили в течение времени, необходимого для полного отрождения личинок из
яиц каждого вида насекомого.
Овицидную активность определяли по формуле 3 (Методические указания…,
2009):
Та ×Сb
О = 100 × (1 − ) (3),
Tb×Ca
где: О – овицидная эффективность (активность),%;
Тa – средняя численность отродившихся (и при этом выживших после
отрождения и приступивших к питанию) личинок в опыте;
Tb – количество яиц в опыте;
Сa – средняя численность отродившихся (и приступивших к питанию)
личинок в контроле;
Сb – количество яиц в контроле;
В случае если Сa=0, то расчеты производились по формуле 4:
Та
О = 100 × (1 − ) (4).
Tb
Инсектицидная активность заключается в изучении летальной или
сублетальной реакции тест-объекта и определении концентрации действующих
веществ (или их суммы), вызывающих гибель 50 и 95% популяции тест-объекта. С

52