Page 136 - 03-Ecologization

DOI: https://doi.org/10.15414/2020.9788055222783
Экологизация защиты растений для сохранения биоразнообразия насекомых и опылителей

защитных мероприятий, направленных на регулирование численности популяций
вредных насекомых и клещей (Voloşciuc, 2009b; Vinson et al., 2016; Boincean et al.,
2020). Комплексное изучение биологических особенностей и взаимоотношений
полезных энтомофагов (паразитоидов и хищников) с их природными хозяевами
позволили разработать и внедрить ряд разнообразных энтомофагов для борьбы с
вредными насекомыми, что позволяет сохранить динамический экологический
баланс в ценозах сельсхозяйственных растений. Разработка и широкое внедрение
биологических пестицидов, способствуя снижению пестицидного прессинга и не
оказывая прямого воздействия на нецелевые объекты, существенно влияют на
соотношение между вредными и полезными компонентами агроэкоценозов,
создавая оптимальные условия для развития опылителей и полезных энтомо- и
акарифагов (Van Engelsdorp, 2009; BCPC, 2014; Орлинский, 2016).
Решение комплексных фитосанитарных и экологических проблем
обусловило повышение интереса к экологически безопасным средствам защиты
растений, ведущее место среди которых принадлежит биологическим препаратам,
обладающим способностью поражать патогенных агентов болезней и вредных
насекомых, регулируя их численность в агрофитоценозах и тем самым обеспечить
возможность получения экологических продуктов.
В исследованиях использованы штаммы энтомопатогенных вирусов, грибов,
актиномицетов, микроспоридий и бактерий антагонистов возбудителей болезней
сельскохозяйственных культур, штаммы полезных микроорганизмов и образцы
биологических препаратов (Voloșciuc, 2009b). В качестве тест-объектов
использованы штаммы фитопатогенных грибов родов Alternaria, Fusarium, Botrytis,
Monilinia и фитопатогенных бактерий рода Pseudomonas, Erwinia, а также полезных
микроорганизмов специализированной коллекции полезных и фитопатогенных
микроорганизмов Института генетики, физиологии и защиты растений (Voloșciuc,
2015).
Антагонистическую активность бактериальных культур оценивали методом
лунок. Результаты учитывали после 18-24 часов инкубации при температуре 28-
30°С по диаметру зон задержки роста тест-культур. Определение
антагонистической активности грибных и бактериальных штаммов проводили
методом встречных культур на картофельно-сахарозном агаре, определяя
характер взаимоотношений антагониста и патогена: наличие или отсутствие
стерильных зон, размер, цвет, плотность, толщину и направление роста мицелия
патогена (Захарова и др., 2002; Битти и др., 2018).
Установление фитотоксичности штаммов проводили методом обработки
семян тестируемыми культурами и биопрепаратами методом погружения
корневой системы здоровых проростков в суспензию штаммов антагонистов для
дальнейшего проращивания в рулонах фильтровальной бумаги.
Определение защитного эффекта культур и штаммов антагонистов
осуществляли на фоне искусственного заражения семян патогенами в
лабораторных условиях во влажной камере методом агаровых блоков. Полевое
тестирование и испытание в лабораторных условиях биологических агентов и
средств, разработанных на их основе, проведено в рандомизированных
повторностях по Б. Доспехову (1985), с математической обработкой результатов.
При статистической обработке результатов экспериментов определяли средние
арифметические значения и их доверительные интервалы для уровня вероятности
95%.

135